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Financé par :
FRSQ

 


Phénotypage


INSTITUT DE RECHERCHES CLINIQUES DE MONTRÉAL

Laboratoire de biochimie moléculaire de l’hypertension
Service de physiologie animale

Responsable: Dr Timothy Reudelhuber


 

Le laboratoire || Les technologies || Les résultats

Le laboratoire Haut de page
Informations générales

Les animaux peuvent bouger dans leurs cages et n'ont pas besoin d'être manipulés ou immobilissé ni anesthésié pendant la période d'acquisition. Ils peuvent également demeurer implanté pendant plusieurs semaines

Hébergement des animaux dans la salle de télémétrie et matrices pour le branchement des plaques réceptrice 

Le service de physiologie animale est situé à l’institut de recherches cliniques de Montréal (IRCM).

Le service propose les techniques d’échocardiographie et de micro injection guidée par échographie. Cette technique permet de diagnostiquer certaines pathologies et changements physiologiques de manière non invasive.

La télémétrie de pression et d’ECG permettent de suivre les variations de ces paramètres sur une longue période de temps (plusieurs jours ou semaines) et ainsi obtenir des valeurs continues afin d’observer les variations sur une longue période de temps en acquisition continue ou ponctuelle.

Le cathéter de mesure de pression intra ventriculaire (Millar) permet quant à lui de mesurer la pression à l’intérieur du ventricule gauche directement à la source. La courbe de pression obtenue permet de calculer des paramètres de contractilité comme par exemple la valeur tau.

Les sondes et le cathéter appartiennent à certains chercheurs, et leur consentement est requis. 

 

Personnel

La responsable du service est Manon Laprise Tech. (Assistante de recherche)



Les technologies Haut de page
1. ÉCHOGRAPHIES

Le service possède l’appareil Vevo 770 (Visual Sonics). Cet appareil permet l’échocardiographie et la micro- injection à haute résolution de petits animaux. On obtient une image de très bonne qualité grâce à une bonne résolution spatiale mais aussi grâce à une très bonne résolution temporelle (70 images/seconde).

Cet appareil permet l’étude des aspects physiologiques et anatomiques sur de petits animaux de laboratoire tels que la souris et le rat de façon non invasive et longitudinale et donne des résultats qualitatifs et quantitatifs.

On l’utilise par exemple pour mettre en évidence des cardiomyopathies dilatées, pour étudier des anomalies de contractions et/ou pour suivre l’évolution de certaines physiopathologies.

Vue rapprochée d’une souris lors d’une échocardiographie avec la sonde 30 Mhz

Vue rapprochée de la plateforme chauffante et du support à sonde

L’appareil est équipé d’un système monté sur rail comprenant une plateforme chauffante pivotantes et amovibles, des plaques détectrices pour les ECG, une sonde de température, un système de micro injection et un support ajustable afin d’immobiliser la sonde pour une acquisition plus précise

Vue d’ensemble du système sur rail

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Le Vevo 770 offre une résolution spatiale jusqu’à 30 microns, qui est à ce jour la plus haute résolution disponible en temps réel.

Appareil Vevo 770

 

2. TÉLÉMÉTRIE

  • Sondes de pression et d’ECG

  • Cette technique consiste à mesurer un signal physiologique (température, ECG, pression sanguine, activité) sur des animaux éveillés et libres dans leurs cages. Les capteurs sont implantés dans l’espace sous-cutané ou dans la cavité abdominale de l’animal. Lorsque le capteur est activé, il émet un signal radio qui est reçu par une antenne, numérisé puis envoyé à un ordinateur qui collecte les données.

    Cette technologie permet d’évaluer plusieurs signaux physiologiques sans perturber l’animal et ce sur une durée allant de quelques jours à quelques mois. Il est possible d’étudier les effets d’une drogue à long terme, du remodelage suite à une chirurgie, du développement d’une physiopathologie sur des animaux transgéniques, etc.

    Le service a une capacité de 20 antennes localisées dans une même salle. Ces espaces sont conçus pour héberger des rats ou des souris.

     

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    Les sondes de pression chez la souris et le rat sont composées d’un cathéter rempli de liquide et scellé au bout par un bouchon de gel qui empêche le sang de pénétrer

    Un cathéter est branché au corps de la sonde qui comporte un détecteur de pression.

    L’aorte abdominale est le site d’implantation de la sonde pression chez le rat

    Implantation pression sanguine chez le rat (aorte abdominale)

    La carotide est le site d’implantation de la sonde pression chez la souris

    Implantation pression sanguine chez la souris (par la carotide)

    Les sondes comportent une pile et sont activées à l’aide d’un aimant.

    Implantation de la sonde d’ECG chez la souris (en lead II) et gros plan de la sonde d’ECG

     

  • Cathéter de pression

  • Le Millar est un cathéter électronique muni d'un détecteur de pression Mikro-tip® à son extrémité distale.

    Ce cathéter permet de collecter des données de pression directement dans le ventricule gauche du cœur et d’observer les effets d’un médicament sur les fonctions hémodynamiques, l’évolution d’une physiopathologie et de mesurer des paramètres de contractilité et d’évaluer la fonction diastolique.

    Le cathéter de pression Millar est branché à un système (Power Lab de ADInstruments) qui capte le signal et l'envoie à l'ordinateur afin qu'il soit converti en données graphiques à l’écran.

     

    La grosseur du cathéter est de 2F pour le rat et de 1.4F pour la souris


    Implantation du cathéter dans le ventricule gauche et détail des cathéters de pression chez le rat et la souris (photographiés à côté d’une pièce de 10 cents).


     

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    1. ÉCHOGRAPHIE

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    Micro injection dans la patte d’un fœtus de souris. La sonde utilisée est de 55Mhz.

    Injection dans la patte d’un embryon de souris

     

    M-Mode de souris et mesure de contractilité et d’épaisseur des parois

    Le mode TM image les déplacements des points situés sur une ligne échographique au cours du temps et permet  la mesure  des dimensions des parois et de la cavité cardiaque. On peut en extraire les paramètres fonctionnels de contraction myocardique

    Exemple de tracé Doppler mitral de souris

     

    2. TÉLÉMÉTRIE

    Exemple de courbe de pression chez la souris


    Exemple d’un cycle de pression circadien sur 4 jours chez la souris


    Exemple Visualisation du signal à l’aide du Power Lab et du logiciel Chart


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